Определение кофейной кислоты с помощью реакции светоизлучения, катализируемой пероксидазой хрена

  • Nikita O. Ronzhin Институт биофизики Сибирского отделения Российской академии наук – обособленное подразделение ФИЦ КНЦ СО РАН https://orcid.org/0000-0003-0735-3362
  • Ekaterina D. Posokhina Институт биофизики Сибирского отделения Российской академии наук – обособленное подразделение ФИЦ КНЦ СО РАН https://orcid.org/0000-0002-8276-9213
  • Olga A. Mogilnaya Институт биофизики Сибирского отделения Российской академии наук – обособленное подразделение ФИЦ КНЦ СО РАН https://orcid.org/0000-0002-1792-1602
  • Vladimir S. Bondar Институт биофизики Сибирского отделения Российской академии наук – обособленное подразделение ФИЦ КНЦ СО РАН https://orcid.org/0000-0003-1555-6514
Ключевые слова: кофейная кислота, пероксидаза корней хрена, пероксид водорода, люминесценция

Аннотация

Обоснование. Благодаря своей высокой антиоксидантной активности кофейная кислота обладает рядом положительных фармакологических эффектов. Для количественного определения кофейной кислоты в различных препаратах в настоящее время используются такие физико-химические методы как жидкостная и газовая хроматографии, УФ-спектрофотометрия, капиллярный электрофорез с масс-спектрометрией. Однако, перечисленные методы являются достаточно сложными и многостадийными, требуют специализированного оборудования и значительных затрат времени. Это определяет потребность поиска новых способов определения кофейной кислоты, отличающихся простотой, чувствительностью и эффективностью ее обнаружения. В настоящей работе нами выявлен эффект излучения квантов света при окислении кофейной кислоты пероксидазой хрена, данная реакция явилась предметом нашего изучения.

Цель. Исследовать некоторые основные показатели реакции люминесценции при окислении кофейной кислоты пероксидазой хрена и оценить возможность определения кофейной кислоты с помощью предложенного люминесцентного метода.

Материалы и методы. В экспериментах использовали реактивы высокой степени чистоты: пероксидазу из корней хрена (horseradish root peroxidase – HRP), кофейную кислоту, раствор перекиси водорода. Водные растворы реактивов для проведения экспериметов готовили in situ в деионизированной воде. Интенсивность и динамику световой эмиссии реакций регистрировали на люминометре. Люминесцентные сигналы измеряли в режиме одно измерение в секунду и выражали уровень световой эмиссии в относительных единицах.

Результаты. Установлено, что в присутствии пероксида водорода HRP катализирует окисление кофейной кислоты с величиной Кm = 1.4 × 10-4 M и обеспечивает реакцию светоизлучения в широком диапазоне рН с максимумом световой эмиссии при pH 8. В экспериментах in vitro показана применимость катализируемой HRP люминесцентной реакции для быстрого выявления и определения концентрации кофейной кислоты в водной среде. Установлено, что линейное увеличение регистрируемого светового сигнала наблюдается в диапазоне концентраций аналита 20–200 мкМ.

Заключение. Выявленная реакция светоизлучения является перспективной аналитической платформой и открывает возможности создания на ее основе новых люминесцентных сенсоров для тестирования кофейной кислоты в различных препаратах и экстрактах из биологических источников.

Информация о спонсорстве. Исследование выполнено в рамках государственного задания Министерства науки и высшего образования РФ (проект № FWES-2024-0018).

EDN: DGSTTB

Скачивания

Данные скачивания пока не доступны.

Биографии авторов

Nikita O. Ronzhin, Институт биофизики Сибирского отделения Российской академии наук – обособленное подразделение ФИЦ КНЦ СО РАН

канд. биол. наук, с.н.с. лаборатории нанобиотехнологии и биолюминесценции

Ekaterina D. Posokhina, Институт биофизики Сибирского отделения Российской академии наук – обособленное подразделение ФИЦ КНЦ СО РАН

м.н.с. лаборатории нанобиотехнологии и биолюминесценции

Olga A. Mogilnaya, Институт биофизики Сибирского отделения Российской академии наук – обособленное подразделение ФИЦ КНЦ СО РАН

канд. биол. наук, с.н.с. лаборатории нанобиотехнологии и биолюминесценции

Vladimir S. Bondar, Институт биофизики Сибирского отделения Российской академии наук – обособленное подразделение ФИЦ КНЦ СО РАН

доктор биол. наук, заведующий лабораторией нанобиотехнологии и биолюминесценции

Литература

Alam, M., Ahmed, S., Elasbali, A. M., et al. (2022). Therapeutic implications of caffeic acid in cancer and neurological diseases. Frontiers in Oncology, 12, 860508. https://doi.org/10.3389/fonc.2022.860508. EDN: https://elibrary.ru/LZZRHU

Albu, C., Eremia, S. A. V., Veca, M. L., et al. (2019). Nano crystalline graphite film on SiO₂: Electrochemistry and electro analytical application. Electrochimica Acta, 303, 284–292. https://doi.org/10.1016/j.electacta.2019.02.093. EDN: https://elibrary.ru/IYYBSJ

Bounegru, A. V., & Apetrei, C. (2021). Laccase and tyrosinase biosensors used in the determination of hydroxycinnamic acids. International Journal of Molecular Sciences, 22, 4811. https://doi.org/10.3390/ijms22094811. EDN: https://elibrary.ru/QGNTUC

Cai, N., Li, Y., Chen, S., et al. (2016). A fluorometric assay platform for caffeic acid detection based on the G quadruplex/hemin DNAzyme. Analyst, 141, 4456–4462. https://doi.org/10.1039/C6AN00543H

Deng, Y., & Lu, S. (2017). Biosynthesis and regulation of phenylpropanoids in plants. Critical Reviews in Plant Sciences, 36, 257–290. https://doi.org/10.1080/07352689.2017.1402852. EDN: https://elibrary.ru/YFNCHR

Dodeigne, C., Thunus, L. N., & Lejeune, R. (2000). Chemiluminescence as diagnostic tool: A review. Talanta, 51, 415–439. https://doi.org/10.1016/S0039-9140(99)00294-5. EDN: https://elibrary.ru/LTTDQV

Duan, Q., Cao, J., & Zhang, J. (2012). Analysis of phenolic acids and their antioxidant activity by capillary electrophoresis mass spectrometry with field amplified sample injection. Analytical Methods, 4, 3027–3032. https://doi.org/10.1039/C2AY25437A. EDN: https://elibrary.ru/RKNRGB

García Guzmán, J. J., López Iglesias, D., Cubillana Aguilera, L., et al. (2019). Assessment of the polyphenol indices and antioxidant capacity for beers and wines using a tyrosinase based biosensor prepared by sinusoidal current method. Sensors, 19, 66. https://doi.org/10.3390/s19010066

Heleno, S. A., Martins, A., Queiroz, M. J., et al. (2015). Bioactivity of phenolic acids: Metabolites versus parent compounds: A review. Food Chemistry, 173, 501–513. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2014.10.057

Kalinke, C., Zanicoski Moscardi, A. P., de Oliveira, P. R., et al. (2020). Simple and low cost sensor based on activated biochar for the stripping voltammetric detection of caffeic acid. Microchemical Journal, 159, 105380. https://doi.org/10.1016/j.microc.2020.105380. EDN: https://elibrary.ru/UVGMLF

Khan, F., Bamunuarachchi, N. I., Tabassum, N., et al. (2021). Caffeic acid and its derivatives: Antimicrobial drugs toward microbial pathogens. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 69, 2979–3004. https://doi.org/10.1021/acs.jafc.0c07579. EDN: https://elibrary.ru/FNNKIH

Oršolić, N., Sirovina, D., Odeh, D., et al. (2021). Efficacy of caffeic acid on diabetes and its complications in the mouse. Molecules, 26, 3262. https://doi.org/10.3390/molecules26113262. EDN: https://elibrary.ru/WITWFA

Razboršek, M. I., Ivanović, M., & Kolar, M. (2021). Validated stability indicating GC MS method for characterization of forced degradation products of trans caffeic acid and trans ferulic acid. Molecules, 26, 2475. https://doi.org/10.3390/molecules26092475. EDN: https://elibrary.ru/IHWYEW

Sikora, F. J., & McBride, M. B. (1990). Aluminum complexation by protocatechuic and caffeic acids as determined by ultraviolet spectrophotometry. Soil Science Society of America Journal, 54, 78–86. https://doi.org/10.2136/sssaj1990.03615995005400010012x

Sorgi, C. A., de Campos Chaves Lamarque, G., Verri, M. P., et al. (2021). Multifaceted effect of caffeic acid against Streptococcus mutans infection: Microbicidal and immunomodulatory agent in macrophages. Archives of Microbiology, 203, 2979–2987. https://doi.org/10.1007/s00203-021-02290-x. EDN: https://elibrary.ru/VYNNNZ

Trifan, A. G., & Apetrei, I. M. (2023). Development of novel electrochemical biosensors based on horseradish peroxidase for the detection of caffeic acid. Applied Sciences, 13, 2526. https://doi.org/10.3390/app13042526. EDN: https://elibrary.ru/GZZLVG

Tudose, M., Baratoiu Carpen, R. D., Anghel, E. M., et al. (2021). A novel composite based on pyrene thiazole grafted on graphene oxide: Physico chemical characterization and electrochemical investigations. Materials Chemistry and Physics, 262, 124315. https://doi.org/10.1016/j.matchemphys.2021.124315. EDN: https://elibrary.ru/UKGPRW

Wang, X., Li, W., Ma, X., et al. (2015). Simultaneous determination of caffeic acid and its major pharmacologically active metabolites in rat plasma by LC MS/MS and its application in pharmacokinetic study. Biomedical Chromatography: BMC, 29, 552–559. https://doi.org/10.1002/bmc.3313

Xie, A., Wang, H., Zhu, J., et al. (2021). A caffeic acid sensor based on CuZnOx/MWCNTs composite modified electrode. Microchemical Journal, 161, 105786. https://doi.org/10.1016/j.microc.2020.105786. EDN: https://elibrary.ru/OIBXCP

Zamarchi, F., Silva, T. R., Winiarski, J. P., et al. (2022). Polyethylenimine based electrochemical sensor for the determination of caffeic acid in aromatic herbs. Chemosensors, 10, 357. https://doi.org/10.3390/chemosensors10090357. EDN: https://elibrary.ru/UCKHOE

Просмотров аннотации: 50

Опубликован
2025-11-30
Как цитировать
Ronzhin, N., Posokhina, E., Mogilnaya, O., & Bondar, V. (2025). Определение кофейной кислоты с помощью реакции светоизлучения, катализируемой пероксидазой хрена. Siberian Journal of Life Sciences and Agriculture, 17(5), 242-254. https://doi.org/10.12731/2658-6649-2025-17-5-1274
Раздел
Биохимия, генетика и молекулярная биология